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Wie tot ist tot?

30. Oktober 2018 | Mirella Wepf

Die Medizin setzt grosse Hoffnungen in die therapeutische Anwendung von Probiotika-Bakterien, welche die menschliche Gesundheit positiv beeinflussen. Doch überleben solche Bakterien, wenn sie zur Aufbewahrung eingefroren oder gefriergetrocknet werden? Die Eawag hat eine Forschungsarbeit der ETH Zürich zu Darmbakterien mit ihrem Know-how aus der Trinkwasser-Mikrobiologie unterstützt – ein Seitenblick in Medizin und Ernährungswissenschaft.

Die Zusammensetzung der menschlichen Darmflora hat einen grossen Einfluss auf das Immunsystem und die Nährstoffaufnahme. Zudem lässt sich bei vielen Darmkrankheiten beobachten, dass sich die Darmflora – im Fachjargon Darmmikrobiota genannt – im Verlauf der Krankheit verändert.

Daher wird derzeit intensiv erforscht, wie Mikroorganismen aus dem menschlichen Darm therapeutisch eingesetzt werden könnten – so auch am Institut für Lebensmittelwissenschaften, Ernährung und Gesundheit der ETH Zürich (IFNH). In ihrer vor kurzem publizierten Dissertation stellte die ETH-Doktorandin Lea Bircher die Konservierung von Darmbakterien ins Zentrum. Damit diese lebenden Mikroorganismen in der Medizin oder als Nahrungsergänzungsmittel verwendet werden können, dürfen sie bei der Aufbewahrung keinen Schaden nehmen. Bircher wählte sechs funktionell verschiedene Bakterienstämme aus und untersuchte, ob und wie gut diese drei Monate in tiefgefrorenem (-80°C) oder gefriergetrocknetem Zustand überstehen, wenn unterschiedliche Gefrierschutzmittel zugegeben werden.

Wissenstransfer im Bereich Labormethoden

Frederik Hammes, von der Eawag-Abteilung Umweltmikrobiologie unterstützte dieses Forschungsvorhaben mit seinem Know-how im Bereich der Durchflusszytometrie, einem Messverfahren, das unter anderem schnellere Analysen ermöglicht als das Heranziehen von bakteriellen Kolonien oder molekularbiologische Techniken.

«Völlig neu war die Durchflusszytometrie für uns nicht», sagt Clarissa Schwab. Sie hat die Doktorarbeit von Bircher am IFNH betreut. «Aber in unserem Labor wurde seit Jahren nicht mehr damit gearbeitet; deshalb waren wir froh, auf die Kenntnisse der Eawag zurückgreifen zu können.»

Frederik Hammes arbeitet bei der Analyse von Trink- und Abwasser schon sehr lange mit der Durchflusszytometrie und verfügt über grosse Erfahrung mit verschiedenen Methoden, um dabei die Lebensfähigkeit von Bakterien, die im Wasser enthalten sind, zu bestimmen.  Gemeinsam erörterten Bircher und Hammes, welches dieser Verfahren sich am besten für die Beurteilung der Darmbakterien nach der Konservierung eignet. Sie entschieden sich relativ rasch für das Einfärben der Bakterien mit SYBR Green und Propidiumiodid (SGPI). Damit lässt sich erkennen, ob die Membran (Aussenhülle) von Bakterien beschädigt ist. Unbeschädigte Bakterien erscheinen im Durchflusszytometer (Messgerät) grün, bei beschädigter Membran weisen sie eine rote Färbung auf.

Der Grund für diese Wahl: Mit dem SGPI-Einfärbeverfahren ist die Eawag besonders gut vertraut – die Methode wurde von der Forschungsgruppe von Frederik Hammes für die Durchflusszytometrie optimiert und im Jahr 2016 standardisiert. Einige Probeläufe im Eawag-Labor zeigten, dass sich damit auch die von Bircher ausgewählten Darmbakterien gut untersuchen lassen. Nach einer Schulung an der Eawag führte die junge Forscherin ihre durchflusszytometrischen Analysen in den Labors der ETH eigenständig durch.

Gefrierschutzmittel haben positiven Effekt

Zur Beurteilung der Überlebensrate der Probiotika zog Bircher vor und nach der Konservierung Kulturen der verschiedenen Stämme heran. Die SGPI-Methode habe ihr wertvolle komplementäre Informationen zur Lebensfähigkeit der einzelnen Proben geliefert. Sie konnte in ihrer Arbeit zeigen, dass das Beifügen von Gefrierschutzmitteln wie Zucker, Inulin oder Glycerol die Überlebensrate der Bakterien teilweise deutlich erhöht. Die einzelnen Gefrierschutzmittel funktionieren jedoch nicht bei allen Bakterien und Konservierungsverfahren gleich gut.

Alle von Bircher untersuchten Bakterien gelten in Fachkreisen als spezielle Hoffnungsträger – man spricht dabei von «Probiotika der nächsten Generation». Doch bis diese tatsächlich auf den Markt gelangen, sind noch zahlreiche weitere Untersuchungen vonnöten.

Konferenz am Anfang

Der fachliche Austausch zwischen Clarissa Schwab und Frederik Hammes begann 2015 an einer Konferenz an der Eawag. Unter dem Titel «How Dead Is Dead» beleuchtete diese Veranstaltung die Grenzen des bakteriellen Lebens: Wann ist eine Bakterienzelle tot und wie lässt sich das messen? Zellen können sich in einem Ruhezustand befinden, in dem ihre metabolischen und physiologischen Prozesse soweit zurückgefahren sind, dass sie nicht mehr detektierbar sind. Können solche Zellen «wiederbelebt» werden? Diese Fragen sind wissenschaftlich noch nicht abschliessend beantwortet – weder in der Medizin noch in der Trinkwasser-Mikrobiologie.

Die Arbeiten von Lea Bircher wurden vom Schweizerischen Nationalfonds (Sinergia 35150) und der ETH Zürich unterstützt.

Publikationen

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         tion techniques is of major importance for therapeutic application. This stu
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         i>Bacteroides thetaiotaomicron, Faecalibacterium prausnitzii, Roseburia inte
         stinalis, Anaerostipes caccae, Eubacterium hallii</i> and <i>Blautia obeum.<
         /i> To improve preservation survival, protectants sucrose and inulin (both 5
         % w/v) were added for lyophilization and were also combined with glycerol (1
         5% v/v) for cryopreservation. Bacterial fitness, evaluated by maximum growth
          rate and lag phase, viability and membrane integrity were determined using
         a standardized growth assay and by flow cytometry as markers for preservatio
         n resistance. Lyophilization was more detrimental to viability and fitness t
         han cryopreservation, but led to better storage stability. Adding sucrose an
         d inulin enhanced viability and the proportion of intact cells during lyophi
         lization of all strains. Viability of protectant-free <i>B. thetaiotaomicron
         </i>, <i>A. caccae</i> and <i>F. prausnitzii</i> was above 50% after cryopre
         servation and storage and increased to above 80% if protectants were present
         . The addition of glycerol, sucrose and inulin strongly enhanced the viabili
         ty of <i>B. obeum</i>, <i>E. hallii</i> and <i>R. intestinalis</i> from 0.03
         –2% in protectant-free cultures to 11–37%. This is the first study that
         quantitatively compared the effect of cryopreservation and lyophilization an
         d the addition of selected protectants on viability and fitness of six stric
         t anaerobic gut microbes. Our results suggest that efficiency of protectants
          is process- and species-specific.
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' (81 chars) description => protected'The increasing use of flow cytometry (FCM) for analyses of environmental sam
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         lts and limited comparability. Viability assessment with FCM is in this cont
         ext of particular interest because incorrect staining could severely affect
         the outcome/interpretation of the results. Here we propose a pipeline for th
         e development and optimization of staining protocols for environmental sampl
         es, demonstrated with the common viability dye combination of SYBR Green I (
         SG) and propidium iodide (PI). Optimization steps included the assessment of
          dye solvents, determination of suitable PI concentration, and determining t
         he optimal staining temperature and staining time. We demonstrated that dime
         thyl sulfoxide (DMSO) could impair membrane integrity, when used for SGPI st
         ock solution preparation, and TRIS buffer was chosen as an alternative. More
         over we selected 6 μM as optimal PI final concentration: less than 3 μM re
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         that 12 μM resulted in false PI-positive staining of intact cells. Low temp
         eratures (25 °C) resulted in a slow reaction and did not enable the stainin
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          temperature. We further showed that a minimum of 15 min were necessary to o
         btain stable staining results. Moreover, we showed that addition of EDTA res
         ulted in 1–39% more PI-positive results compared to an EDTA-free sample, a
         nd argue that insufficient evidence currently exist in favor of adding EDTA
         to all samples in general. Altogether, the data clearly shows the need to be
          careful, precise and reproducible when staining cells for flow cytometric a
         nalyses, and the need to assess and optimize staining protocols with both vi
         able and non-viable bacteria.
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Bircher, L.; Geirnaert, A.; Hammes, F.; Lacroix, C.; Schwab, C. (2018) Effect of cryopreservation and lyophilization on viability and growth of strict anaerobic human gut microbes, Microbial Biotechnology, 11(4), 721-733, doi:10.1111/1751-7915.13265, Institutional Repository
Nescerecka, A.; Hammes, F.; Juhna, T. (2016) A pipeline for developing and testing staining protocols for flow cytometry, demonstrated with SYBR Green I and propidium iodide viability staining, Journal of Microbiological Methods, 131, 172-180, doi:10.1016/j.mimet.2016.10.022, Institutional Repository

Foto

Darmbakterien Roseburia intestinalis eingefärbt mit SYBR Green und Propidiumiodid (SGPI). In Bakterien mit unbeschädigter Membran kann nur das SYBR Green eindringen, daher erscheinen sie grün. Bei beschädigter Membran kommt auch das Propidiumiodid durch. Dieses weist eine rote Fluoreszenz auf.
(Foto: ETH Zürich, Lea Bircher)